血管组织解离的主要目的是分离血管中的细胞成分，以便进行更深入的研究和分析。血管组织解离常见方法包括机械法、酶消化法和化学法。机械法主要是通过物理手段分离组织，化学法主要是使用化学试剂破坏细胞间连接，酶消化法则是利用酶分解细胞外基质。
血管组织解离试剂盒主要是采用酶消化法对血管组织进行解离消化，解决血管组织解离难度大的问题，完成单细胞悬液的制备。血管组织解离试剂盒使用方法如下：
准备工作：水浴锅设置到37℃、配制含5% FBS的PBS。
1.取一个5 mL离心管，加入210 μL血管组织解离液1和2790 μL的RPMI 1640培养基，混匀。
2.将血管组织用PBS清洗干净，剪碎，并转移到第1步准备好的溶液中，摇晃混匀。
3.放在37℃水浴锅中20 min。过程中，每隔3 ~ 5 min摇晃混匀。
4.消化20 min结束后，4℃，300 ×g离心5 min，弃上清。
5.向沉淀中加入3 mL RPMI 1640培养基，吹打混匀，4℃，300 ×g离心5 min，弃上清。
6.向沉淀中加入2470 μL RPMI 1640培养基和530 μL血管组织解离液2，吹打混匀，置于37℃水浴锅中30 min ~ 3 h。
7.不同类型、状态的血管消化时间不同，每隔10 ~ 15 min质检一次细胞悬液，根据细胞总量及活性等确定消化停止时间。
8.消化完成后，用70 μm细胞筛进行过滤，收集滤液于新的15 mL离心管中。
9.加3 mL RPMI 1640培养基于消化的离心管中，上下颠倒涮洗管壁，涮洗液同样经过同一个70 μm细胞筛进行过滤，收集滤液于第8步的15 mL离心管中。
10.重复步骤9两次，共洗3次，共收集滤液12 mL。
11.将收集液于4℃，300 ×g离心5 min，弃上清。
12.用5 mL含5% FBS的PBS重悬沉淀，吹打混匀，4℃，300 ×g离心5 min，弃上清。
13.重复步骤12一次，共清洗两次。
14.用50 μL ~ 2 mL含5% FBS的PBS重悬沉淀，重悬液的体积根据所需的细胞浓度进行调整。
15.用细胞计数仪对细胞悬液进行质控并记录。
16.质控结束后请立即进行后续实验。
